人扁桃体动脉内皮细胞分离和培养的注意事项有哪些?
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分类: 细胞 |
人扁桃体动脉内皮细胞的分离和培养对操作精度、环境控制及细胞特性维持要求较高,稍不注意可能导致细胞污染、活性降低或纯度不足,以下是关键注意事项:
一、样本处理与伦理规范
1、伦理与样本质量
必须获得伦理委员会批准及患者知情同意,明确样本来源的合法性(如扁桃体切除术标本需排除传染性疾病)。
样本需新鲜处理:扁桃体组织离体后应在 2 小时内送至实验室,若延迟需用含双抗的冰冷 PBS 或培养基保存(4,不超过 6 小时),避免组织缺血坏死影响细胞活性。
2、无菌预处理
组织表面用 75% 酒精快速擦拭消毒(10-15 秒),再用含高浓度双抗(青霉素 - 链霉素终浓度 200 U/mL)的 PBS 反复冲洗 3-5 次,彻底去除表面血迹、黏液及可能的微生物污染。
二、血管分离的关键细节
1、解剖操作
需在解剖显微镜下精细分离动脉:扁桃体组织中血管较细,避免误剪或过度牵拉导致内皮细胞损伤。
剥离动脉外膜的结缔组织时,尽量保留完整的内膜层(内皮细胞位于内膜最内层),减少杂细胞(如平滑肌细胞)混入。
2、组织块大小
动脉段剪碎至 0.5 mm 左右为宜:过大不利于酶消化,过小可能破坏细胞完整性。
三、酶消化的控制
1、消化试剂选择与浓度
优先用胶原酶 或 型(0.1%-0.2%),避免用胰蛋白酶直接消化组织(易损伤内皮细胞);若后续传代用胰酶,需严格控制浓度(0.25%)和时间。
消化液需预热至 37,避免低温刺激细胞。
2、消化时间把控
胶原酶消化通常 30-60 分钟,期间每 15 分钟轻轻震荡一次,镜下观察组织块边缘是否松散(避免过度消化导致细胞破裂)。
终止消化需及时:加入含 10%-20% FBS 的培养基,通过血清中的蛋白酶抑制剂终止酶活性。
四、原代培养的环境优化
1、培养基与添加剂
用内皮细胞专用培养基或添加内皮细胞生长因子(ECGF,10-20 ng/mL)、肝素(50-100 μg/mL)的 DMEM/F12:肝素可抑制平滑肌细胞等杂细胞生长,ECGF 促进内皮细胞增殖。
FBS 需筛选:选择低内毒素批次(<0.1 EU/mL),终浓度 10%-15%(过高易导致杂细胞过度生长)。
2、培养表面处理
培养皿需预包被明胶(0.1%)或纤维连接蛋白(10 μg/mL):内皮细胞依赖基质贴壁,未包被表面会导致贴壁率低、细胞形态异常。
3、培养条件稳定
incubator 需严格维持 37、5% CO、湿度 95%:温度波动 > 1或 CO浓度异常会导致培养基 pH 值改变,影响细胞存活。
原代培养前 24 小时不换液:避免干扰细胞贴壁(内皮细胞贴壁较慢,约 6-12 小时开始贴壁,24 小时后可见少量贴壁细胞)。
五、纯化与杂细胞去除
1、早期污染防控
若出现成纤维细胞(长梭形、排列无序)或平滑肌细胞(束状排列)污染,可在传代时采用差速贴壁法:将细胞悬液接种到未包被的培养皿,30 分钟后将未贴壁细胞(以内皮细胞为主)转移至新的包被皿中(成纤维细胞贴壁更快)。
避免频繁操作:原代培养初期细胞脆弱,过度晃动或换液会导致细胞脱落。
2、及时换液
培养 48 小时后首次换液,彻底去除未贴壁的死细胞、组织碎片及酶残留;后续每 2-3 天换液一次,保持培养基营养充足。
六、传代与冻存注意事项
1、传代时机与操作
细胞融合度达 80%-90% 时传代(避免过密导致接触抑制,影响增殖),传代比例 1:2 为宜(过高稀释会延长细胞恢复时间)。
胰酶消化时,镜下观察到细胞变圆、间隙增大即可终止(通常 1-2 分钟),避免消化过度导致细胞膜损伤;吹打细胞时用巴氏吸管轻柔操作,减少机械损伤。
2、冻存与复苏
冻存液配方:70% 培养基 + 20% FBS+10% DMSO(现配现用,DMSO 需梯度降温避免细胞结晶损伤)。
冻存过程:4 30 分钟→-20 1 小时→-80过夜→转入液氮(长期保存);复苏时 37水浴快速解冻(1-2 分钟),立即加入培养基稀释 DMSO,离心后重悬接种。
七、细胞鉴定与质量控制
纯度验证
传代 2-3 次后需鉴定:通过免疫荧光检测 CD31、vWF 等内皮细胞特异性标志物(阳性率需≥95%),排除杂细胞污染。
功能验证:进行管腔形成实验,确认细胞功能正常。
八、其他注意事项
操作全程避免引入气泡:气泡会破坏细胞贴壁环境,导致局部细胞死亡。
避免频繁观察:减少培养箱开门次数,维持稳定的温湿度和 CO浓度。
传代限制:原代内皮细胞通常传至 5-6 代后会出现衰老、功能下降,建议在 3-4 代内使用,或早期冻存保种。
通过严格把控以上环节,可显著提高人扁桃体动脉内皮细胞的分离成功率、纯度及活性,为后续实验研究提供可靠的细胞模型。
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