细胞实验中原代培养与传代培养的区别主要体现在哪些方面？

 

百欧博伟生物：在细胞实验中，原代培养（Primary Culture）和传代培养（Subculture/Passage）是细胞培养的两个关键阶段，二者的主要区别体现在以下方面：

 

一、定义与来源

 

1、原代培养：

 

直接从活体组织（如动物、植物或人体）分离的细胞进行的首次培养。

 

细胞来源：新鲜组织经酶（如胰蛋白酶、胶原酶）消化或机械分离后获得。

 

特点：细胞未经过传代，仍保留原始组织的遗传和功能特性。

 

2、传代培养：

 

将原代培养的细胞从原培养容器中分离，重新接种到新培养基中继续扩增的过程。

 

细胞来源：原代培养的细胞增殖到一定密度后（通常覆盖培养器皿80-90%面积），需分瓶扩增。

 

特点：细胞可能经历多次传代，逐渐发生表型或基因型改变。

 

二、操作步骤

 

1、原代培养：

 

步骤复杂：需组织获取→灭菌→消化→离心→细胞悬液制备→初次接种。

 

存活率低：分离过程易损伤细胞，部分细胞无法贴壁或增殖。

 

异质性强：可能包含多种细胞类型（如成纤维细胞、上皮细胞等）。

 

2、传代培养：

 

步骤简单：移除旧培养基→胰酶消化贴壁细胞→离心收集→分瓶扩增。

 

存活率高：细胞已适应体外环境，增殖能力较强。

 

均质性提升：传代过程中部分细胞类型可能被淘汰（如成纤维细胞过度生长）。

 

三、细胞特性

 

 

 

四、应用与限制

 

1、原代培养的优势：

 

结果更接近体内真实情况，适合研究细胞-组织特异性功能。

 

常用于药物筛选、毒性测试、肿瘤细胞原代培养等。

 

缺点：操作繁琐、污染风险高、细胞存活率低、批次差异大。

 

2、传代培养的优势：

 

可大规模扩增细胞，满足实验需求。

 

通过多次传代可筛选出稳定细胞株。

 

缺点：遗传漂变、功能退化、可能发生恶性转化（永生化）。

 

五、注意事项

 

原代培养需严格无菌操作，避免微生物污染。

 

传代次数限制：正常细胞存在“海弗利克极限”（有限分裂次数），而癌细胞可能无限增殖。

 

实验设计中需明确标注细胞代数，高代数细胞可能影响实验结果可靠性。

 

六、总结

 

1、原代培养：起点是新鲜组织，保留体内特性，但操作复杂、异质性强。

 

2、传代培养：起点是原代细胞，便于扩增和标准化，但可能丧失原有特性。

 

根据实验目的（如生理研究vs.细胞工程）选择合适的培养方式！

 

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