大鼠胚皮肤成纤维细胞的分离与培养方法及应用领域!
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分类: 细胞 |
大鼠胚皮肤成纤维细胞(Rat Embryonic Skin Fibroblasts,简称 RESF)是从大鼠胚胎皮肤组织中分离培养的成纤维细胞,属于原代细胞或传代细胞系,在生物学研究中应用广泛。以下从细胞特性、分离培养方法、应用领域及注意事项等方面进行详细介绍:
一、细胞基本特性
1、来源与形态
来源于大鼠胚胎(通常选择 13-18 天龄胚胎,此时皮肤组织分化程度低,成纤维细胞活性高、增殖能力强)的皮肤真皮层。
形态呈长梭形或多角形,贴壁生长,细胞质丰富,细胞核明显,在显微镜下呈典型的成纤维细胞形态(类似“纺锤体”),排列具有一定方向性。
2、生物学功能
主要功能包括合成和分泌胶原蛋白、弹性纤维等细胞外基质成分,参与皮肤组织的构建、修复和再生。
具有较强的增殖能力和分化潜能(在特定诱导条件下可向肌成纤维细胞等方向分化),是研究细胞增殖、分化、凋亡及组织损伤修复的理想模型。
3、培养特性
属于贴壁依赖型细胞,需要附着在培养瓶 / 皿表面才能生长,传代时需用胰蛋白酶等消化酶处理使其脱离基质。
最适培养温度为 37,需要 5% CO的湿润环境以维持培养基 pH 稳定(通常 pH 7.2-7.4)。
对营养要求较高,常规使用含 10%-20% 胎牛血清(FBS)的 DMEM 或 MEM 培养基。
二、分离与培养方法(原代培养)
1、材料准备
实验动物:13-18 天龄大鼠胚胎(无菌条件下获取)。
试剂:PBS 缓冲液(无钙镁离子)、0.25% 胰蛋白酶 - EDTA 消化液、含 10% FBS 的 DMEM 培养基、青霉素 - 链霉素混合液(双抗)。
仪器:超净工作台、CO培养箱、倒置显微镜、无菌手术器械(剪刀、镊子)、培养皿、离心管等。
2、分离步骤
取材:无菌条件下取出大鼠胚胎,用预冷的 PBS 冲洗 3 次以去除血迹;剥离胚胎皮肤组织(避开毛发和皮下脂肪),剪成 1-2mm³ 的小块。
消化:将组织块转移至离心管,加入 5-10 倍体积的 0.25% 胰蛋白酶 - EDTA,37水浴消化 20-30 分钟(期间轻轻摇晃);消化结束后,加入等量含血清的培养基终止消化,用吸管轻轻吹打使细胞分散。
过滤与离心:用 200 目细胞筛过滤细胞悬液,去除未消化的组织碎片;1000rpm 离心 5 分钟,弃上清,用含双抗的完全培养基重悬细胞。
3、培养与传代
接种培养:将细胞悬液接种至培养瓶中,置于 37、5% CO培养箱中培养;24 小时后观察细胞贴壁情况,更换培养基以去除未贴壁细胞和碎片。
传代:当细胞汇合度达到 80%-90% 时进行传代。具体操作:弃去旧培养基,PBS 冲洗 2 次;加入适量胰蛋白酶 - EDTA,37孵育 2-5 分钟(镜下观察细胞变圆、脱落);加入血清培养基终止消化,吹打细胞成单细胞悬液;离心后重悬,按 1:2 或 1:3 比例接种至新培养瓶。
三、主要应用领域
1、皮肤生物学研究
研究皮肤创伤愈合机制:观察成纤维细胞在伤口修复中的迁移、增殖及基质合成过程。
探讨皮肤病发病机制:如银屑病、瘢痕形成中,成纤维细胞的异常活化与细胞外基质代谢失衡的关系。
2、药物筛选与毒性测试
评估化妆品、外用药物对皮肤细胞的毒性或刺激性(替代动物实验的体外模型)。
筛选促进伤口愈合或抑制瘢痕增生的候选药物。
3、细胞外基质研究
研究成纤维细胞合成胶原蛋白、透明质酸等基质成分的调控机制,以及基质与细胞信号通路的相互作用。
4、干细胞研究辅助模型
作为饲养层细胞支持胚胎干细胞或诱导多能干细胞(iPSC)的生长与分化(提供营养因子和细胞外基质微环境)。
四、培养注意事项
无菌操作:原代细胞分离和传代过程需严格无菌,避免污染(细菌、真菌或支原体污染会导致细胞死亡或功能异常)。
血清质量:胎牛血清的质量对细胞生长影响较大,建议选择批次稳定、经过筛选的血清(可提前做血清敏感性测试)。
传代时机:避免细胞过度汇合(超过 90%),否则会导致细胞形态改变、增殖能力下降;长期传代(如超过 10 代)可能出现细胞老化或表型漂移,实验需控制在早期传代阶段。
冻存与复苏:如需长期保存,可在细胞对数生长期冻存(冻存液含 10% DMSO+90% FBS),-80短期保存或液氮长期保存;复苏时 37水浴快速融化,离心去除 DMSO,避免其对细胞的毒性。
大鼠胚皮肤成纤维细胞因其来源稳定、培养难度较低且功能明确,成为皮肤组织工程、细胞生物学及药理学研究中的常用工具细胞,为相关领域的基础研究和应用开发提供了重要支持。
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