细胞培养实验中细胞转染的常用方法与操作步骤！

一、方法

1、脂质体转染法

阳离子脂质体表面带正电荷，能与核酸的磷酸根通过静电作用，将DNA分子包裹入内，形成DNA脂复合物，也能被表面带负电的细胞膜吸附，再通过融合或细胞内吞进入细胞。脂质体转染适用于把DNA转染入悬浮或贴壁培养细胞中，是目前实验室最方便的转染方法之一，其转染率较高，优于磷酸钙法。由于脂质体对细胞有一定的毒性，所以转染时间一般不超过24小时。

2、电穿孔转染法

电流能够可逆地击穿细胞膜形成瞬时的水通路或膜上小孔促使DNA分子进入胞内，这种方法就是电穿孔。当遇到某些脂质体转染效率很低或几乎无法转入时建议用电穿孔法转染。一般情况下，高电场强度会杀死50%-70% 的细胞。现在针对细胞死亡开发出了一种电转保护剂，可以大大的降低细胞的死亡率，同时提高电穿孔转染效率。

3、病毒感染

对于脂质体转染与电穿孔转染都无法成功转染的细胞系建议用病毒感染，此法可以快速100%感染，检测成功率高。

二、常用步骤

1、转染试剂的准备

将400ul去核酸酶水加入管中，震荡10秒钟，溶解脂状物。

震荡后将试剂放在－20摄氏度保存，使用前还需震荡。

2、选择合适的混合比例(1：1－1：2/脂质体 体积：DNA质量)来转染细胞。在一个转染管中加入合适体积的无血清培养基。加入合适质量的MyoD或者EGFP的DNA，震荡后在加入合适体积的转染试剂，再次震荡。

3、将混合液在室温放置1015分钟。

4、吸去培养板中的培养基，用PBS或者无血清培养基清洗一次。

5、加入混合液，将细胞放回培养箱中培养一个小时。

6、到时后，根据细胞种类决定是否移除混合液，之后加入完全培养基继续培养24－48小时。

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