纯菌株生长率的常用测定方法及核心步骤与注意事项!
(2025-09-02 16:16:16)
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分类: 百欧博伟生物 |
百欧博伟生物:测定纯菌株的生长率是微生物学中的基础实验,核心在于精确追踪特定培养条件下活菌数量或生物量随时间的变化,尤其是在对数生长期的指数增长速率。以下是常用的测定方法和关键步骤:
一、常用测定方法
1、平板菌落计数法(最准确,测活菌数)
原理:将菌液梯度稀释,涂布平板培养后计数单菌落(CFU)。
步骤:
定期取样(如0, 2, 4, 6, 8, 24小时)。
用无菌生理盐水或缓冲液进行十倍系列稀释。
取适宜稀释度的菌液涂布或倾注平板(通常做3个平行)。
适宜温度下培养24-48小时,计数30-300 CFU的平板。
计算每毫升原菌液中的活菌数(CFU/mL)。
优点:直接测定活菌数,结果准确可靠。
缺点:操作繁琐、耗时长、无法实时监测。
2、分光光度法(测浊度,间接反映生物量)
原理:利用菌体悬浮液对光的散射(OD值),常用波长600 nm(OD)。
步骤:
在无菌锥形瓶(如含100mL培养基)中接种少量纯菌株(确保初始OD低)。
置于摇床(恒温、适宜转速)培养。
定期取样,用未接种的培养基作空白对照,测定OD值。
记录OD值随时间的变化。
优点:快速、简便、非破坏性、可实时/半实时监测。
缺点:
测定的是总生物量(包括死菌),不区分活菌。
需建立OD与CFU/mL的标准曲线(通过平板计数校准)。
仅适用于均匀悬浮生长的菌株(不适用于成团、成膜菌)。
线性范围有限(通常OD < 0.5),超过后需稀释再测。
3、干重法(直接测生物量总量)
原理:收集菌体,洗净干燥后称重。
步骤:
取一定体积培养液,离心收集菌体。
用无菌水或缓冲液洗涤数次(去除培养基残留)。
将菌体转移至已称重的滤膜或离心管,在105°C烘干至恒重。
冷却后称重,计算单位体积培养液的菌体干重(mg/mL或 g/L)。
优点:直接测量生物量总量,结果直观。
缺点:破坏性取样、操作繁琐、耗时、灵敏度较低(需大量菌体)。
4、流式细胞术(FCM)
原理:用荧光染料区分活/死菌,快速计数单细胞。
优点:高通量、可区分生理状态、快速。
缺点:仪器昂贵、需优化染色条件。
二、核心步骤与注意事项
1、菌株与培养基:
确保使用纯培养物(单菌落来源)。
选择最适培养基和培养条件(温度、pH、溶氧等)。
2、接种:
使用对数生长期的新鲜菌液接种。
接种量宜小(如1%),确保初始菌密度低(OD ≈ 0.05),能清晰观察到完整的生长曲线。
3、取样与时间点:
对数生长期需密集取样(如每30-60分钟),延滞期和稳定期间隔可延长。
严格保持无菌操作。
每次取样后立即测定或适当保存(如4°C冷藏,尽快处理)。
4、平行与重复:
必须设置生物学重复(≥3个平行培养物)。
每次测定设置技术重复(如测OD时读3次取平均;平板计数做3个平行平板)。
5、数据记录:
精确记录取样时间、培养条件、稀释倍数、测量值等。
三、计算生长率
1、绘制生长曲线:
以时间(小时)为横坐标,以对数坐标下的CFU/mL(或OD、干重)为纵坐标作图。
识别出对数生长期(直线段)。
2、计算比生长速率(μ):
在对数生长期,菌体数量呈指数增长:N_t = N_0 * e^(μt)
比生长速率公式:μ = (ln N_t - ln N_0) / (t - t_0)(单位:h¹)
N_t:时间t时的菌量(CFU/mL 或 OD)
N_0:时间t时的菌量
t - t_0:时间间隔(小时)
3、计算代时(Generation Time, Doubling Time):
代时(g)是菌量翻倍所需的时间:g = ln2 / μ ≈ 0.693 / μ(单位:小时)
四、关键注意事项
校准:使用OD法时,必须用平板计数法建立该菌株在特定条件下的OD - CFU/mL标准曲线。
范围:OD法仅在低OD值范围内(通常<0.5)与细胞浓度呈线性关系,超出范围需稀释。
对照:分光光度法必须用未接种的培养基调零(空白对照)。
稳定性:严格控制培养条件(温度、摇床转速),避免波动影响结果。
生理状态:接种菌株的生理状态和培养历史需保持一致。
曲线完整性:确保取样覆盖所有生长时期,尤其是对数期早期。
五、总结
推荐组合:分光光度法(实时监测OD)+ 平板计数法(关键时间点校准)是最常用且可靠的方法。
核心输出:比生长速率(μ)和代时(g)是衡量纯菌株生长能力的核心参数。
严谨性:严格的实验设计、无菌操作、充分的平行重复和准确的数据记录是获得可靠结果的基础。
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