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超纯水、高纯水、去离

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纯水:既将水中的导电介质几乎完全去除,又将水中不离解的胶体物质、气体及有机物均去除至很低程度的水,电阻率大于18MΩ.cm或接近18.25MΩ.cm极限值(25℃)。

高纯水:水的纯度比超纯水低一点,基本跟超纯水是一个概念。也有个别厂家把国标二级水叫高纯水。
去离子水:指除去了呈离子形式杂质后的纯水。去除水中的阴离子和阳离子后水中仍然存在可溶性的有机物。
纯净水:原水经过反渗透和杀菌装置等成套水处理设施后除去了原水中绝大多数无机盐离子、微生物和有机物杂质,可以直接生饮的纯水。
UP水:超纯水UltraPure的简称。国产超纯水机市场占有率第一品牌优普®的超纯水机上面常能看到UP

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引物设计

探针

实时多重pcr探针

taqmanmgb探针

taqman探针

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引物设计 

细心地进行引物设计是PCR中最重要的一步。理想的引物对只同目的序列两侧的单一序列而非其他序列退火。设计糟糕的引物可能会同扩增其他的非目的序列。下面的指导描述了一个可以增加特异性的引物所具有的令人满意的特点: 

 

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多聚甲醛

固定液

免疫荧光封闭液

结晶紫

结晶紫染色液

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免疫荧光及空斑实验用试剂配制

1)4%多聚甲醛固定液配制:称取4g

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分子生物学

western

试剂

配制

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Western blot相关试剂的配制

1)  1.0 mol/L Tris

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试剂配制

引物

稀释

保存

校园

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1.引物溶解
合成报告单给出了每OD引物稀释为100μmoL/L(即100pmol/ul)浓度的加水量,可以根据实验需要加入适量的双蒸水(PH>6.0)或TE缓冲液(PH 7.5-8.0),开启瓶盖溶解之前最好在3000-4000转/分钟的转速下离心1分钟,防止开盖时引物散失

2.引物保存
没有溶解的引物非常稳定,可以在-20℃下保存至少1年,溶解好的引物可以事先稀释为100μmoL/L储存液,分装数份保存于-20℃冰箱,可以保存至少半年以上(反复多次冻融会降低使用寿命)。使用前,将浓溶液稀释成工作液10 pmol/ml或20 pmol/ml)后进行实验

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hek-293

细胞培养

校园

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  293细胞的缺陷是生长过程中贴壁强度比较小。所以在实验过程中容易流失,从而影响实验结果。如果一个实验室新得到的293细胞是邮寄得到的并且细胞在培养瓶中,就需要让细胞沉降几天时间,因为大量细胞会漂浮在培养液里。

来源:人体肾脏 形态:上皮细胞 生长特性:贴壁 注释:该细胞含腺病毒5 DNA 。

培养液:完全培养基。

传代: 吸去培养液。 胰酶消化,以1:2到1:4为宜,传代期间培养液2-3天更换1次。
冻存:90%培养液+10%DMSO冻存于液氮。

293A:是293中后来又建的细胞亚株,这个A是adhere的意思,就是说293倾向于形成单层细胞(monolayer),它比293好的地方是在做计算病毒数量的空斑试验(plaque assay)293A是均匀的一层,没有细胞重叠和细胞空隙(hole),就这个意思,这个A所对的是293S(suspension).
293细胞系是原代人胚肾细胞转染5型腺病毒(Ad 5) DNA的永生化细胞,表达转染的腺病毒5的基因。
293T细胞表达 E1A蛋白,S40大T抗原,含有S40复制起始点与启动子区的质粒可以复制。
293FT细胞能制造高滴度的慢病毒。293A细胞来
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western

blot

pvdf膜

nc膜

尼龙膜

校园

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Western Blot印迹常用的转移膜主要是硝酸纤维素膜(Nitrocellulose Blotting Membranes,NC)和PVDF膜(Polyvinylidene-Fluoride),此外也有用尼龙膜、DEAE纤维素膜做蛋白印迹。

这几种膜的特点

 

NC膜

尼龙膜

PVDF膜

灵敏度和分辨率

背景

较高

 

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研究生

试验

转基因

细胞培养

校园

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质粒的不相容性:指的是原核复制过程中具有相同复制起始位点和利用同一复制体系的质粒存在互相竞争的现象,即分子克隆上讲过的质粒不相容原理,但是质粒在真核细胞内没有复制过程,也就没有这一现象。

严谨性质粒和松弛性质粒:按照复制性质,可以把质粒分为两类:一类是严紧型质粒,当细胞染色体复制一次时,质粒也复制一次,每个细胞内只有1~2个质粒;另一类是松弛型质粒,当染色体复制停止后仍然能继续复制,每一个细胞内一般有20个左右质粒。一般分子量较大的质粒属严紧型。分子量较小的质粒属松弛型。质粒的复制有时和它们的宿主细胞有关,某些质粒在大肠杆菌内的复制属严紧型,而在变形杆菌内则属松弛型。
质粒的传递(转移):是细菌遗传物质转移的一个重要方式。有些质粒本身即具有转移装置,如耐药性质粒(R质粒);而有些质粒本身无转移装置,需要通过媒介(如噬菌体)转

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校园

研究生

知识

细胞培养

试验

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    近年来随着基因克隆技术的发展,已经提出了好几种能有效地将外源DNA导入哺乳动物细胞的实验方法。在本节,我们将叙述病毒载体以外的六种最常用最有效的方法种用于哺乳动物基因转移的技术手段。包括如下:
(i)磷酸钙转染技术;(ii)DEAE-葡聚糖转染技术;(iii)聚阳离子-DSMO转染技术;(iv)电穿孔技术;(v)显微注射技术;(Vi)原生质体融合技术。

 一.磷酸钙转染技术

  (1)磷酸钙转染的基本步骤
  最初是由F.L.Graham等人于1973年创立的。基本操作过程包括
  ①将待转染的外源DNA同CaCl2混合制成CaCl2-DNA溶液;
  ②在不断搅拌过程中,逐滴缓缓地加入到Hepes-磷酸钙溶液中去,形成一种磷酸钙-DNA共沉淀;
  ③然后用吸管仔细转移共沉淀物,使之粘附到培养的哺乳动物单层细胞表面,就会迅速地被细胞所捕获。
保温几小时后,将

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