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微生物简单染色(单染色)原理与标准流程及注意事项!

(2025-12-17 15:41:55)
标签:

技术

方法

注意事项

分类: 百欧博伟生物

  微生物简单染色(单染色)原理与标准流程及注意事项!

 


百欧博伟生物:简单染色是利用单一染料对微生物进行染色的基础技术,核心目的是使微生物细胞与背景形成颜色对比,便于观察细胞形态、大小和排列方式(适用于细菌、酵母菌等)。以下是标准化操作流程、原理及关键注意事项,兼顾实用性和合规性:

 

一、染色原理

 

简单染色的核心是利用染料与细胞的亲和力:

 

常用染料为碱性染料(如结晶紫、美蓝、番红),其阳离子与细菌细胞壁(含肽聚糖,带负电)发生静电吸附,使细胞着色;

 

背景为中性/酸性,不吸附染料,形成清晰对比;

 

无需分化步骤,操作简便,适用于快速观察细胞基本形态。

 

二、实验材料

 

1、样品

 

液体样品:细菌菌液(培养 18-24h,对数期细胞活性高、形态典型);

 

固体样品:菌落(挑取少量,用无菌水稀释成菌悬液)。

 

2、试剂

 

染色液:结晶紫染液(0.1%)、美蓝染液(0.1%)、番红染液(0.5%)(三选一,结晶紫染色效果最稳定);

 

辅助试剂:无菌生理盐水(0.85% NaCl,维持细胞渗透压,避免细胞破裂)、蒸馏水(冲洗用)。

 

3、器材

 

载玻片(经酸液清洗、灭菌,无油污)、盖玻片、接种环(灭菌)、酒精灯、显微镜(含油镜)、吸水纸、滴管。

 

三、标准操作流程(6 步核心法)

 

1、涂片(关键:薄而均匀)

 

取一块洁净载玻片,用滴管滴 1 滴无菌生理盐水于载玻片中央;

 

用灭菌冷却后的接种环,挑取少量样品(菌液取 1 环,固体菌落挑取针尖大小),放入生理盐水中轻轻研磨,使样品均匀分散(避免细胞聚集,影响观察);

 

用接种环将菌悬液涂成直径 1-2cm 的薄涂片(涂片过厚会导致染色不均、脱片,过薄则细胞过少);

 

自然干燥(或置于酒精灯火焰上方 5-10cm 处烘干,避免高温烤死细胞,导致形态畸变)。

 

2、固定(目的:杀死细胞 + 使细胞黏附载玻片)

 

待涂片完全干燥后,手持载玻片两端,将涂片面朝上,快速通过酒精灯火焰2-3 次(每次 2-3 秒,以载玻片背面不烫手为宜);

 

固定时避免火焰直接灼烧涂片(否则细胞会碳化,无法观察形态)。

 

3、染色(控制时间,避免过染/欠染)

 

用滴管向涂片上滴加染色液,使染色液完全覆盖涂片区域(无需过量);

 

染色时间:结晶紫/番红染 1-2min,美蓝染 3-5min(碱性染料染色时间较短,过染会导致背景着色,欠染则细胞颜色过浅)。

 

4、冲洗(关键:水流轻柔,避免冲掉细胞)

 

染色结束后,手持载玻片倾斜 45°,用缓慢流动的蒸馏水从涂片上方冲洗(水流方向与涂片平行,避免垂直冲洗冲击细胞);

 

冲洗至流出的水呈无色为止(残留染料会导致背景浑浊)。

 

5、干燥(避免细胞变形)

 

用吸水纸轻轻吸去涂片上的水分(吸水纸从边缘向中心按压,切勿擦拭,否则会擦掉细胞);

 

若仍有少量水分,可再次置于酒精灯上方烘干(或自然干燥),确保涂片完全干燥(否则油镜观察时会出现气泡)。

 

6、镜检(从低倍镜到油镜)

 

先在低倍镜(10×)下找到涂片区域,再换高倍镜(40×)定位细胞;

 

1 滴香柏油于涂片中央,换油镜(100×)观察,调节细准焦螺旋,直至细胞清晰;

 

观察结果:细胞呈染料颜色(结晶紫→紫色,美蓝→蓝色,番红→红色),背景无色,可观察细胞形态(球菌、杆菌、螺旋菌)、大小及排列方式(单生、链状、葡萄状等)。

 

四、关键注意事项(影响成功率的核心要点)

 

1、涂片质量控制

 

必须薄而均匀:涂片过厚→染色不均、脱片;过薄→细胞数量少,难以统计;

 

避免气泡:研磨菌悬液时轻柔操作,防止产生气泡,影响观察。

 

2、固定操作规范

 

火焰固定次数:2-3 次为宜,过多→细胞碳化;过少→细胞未固定,冲洗时易脱落;

 

接种环冷却:灭菌后需在无菌培养基边缘冷却 3-5 秒,避免高温杀死细胞。

 

3、染色时间控制

 

严格遵循染料对应的时间:结晶紫 1-2min(最佳 1.5min),过长会导致背景着色,过短则细胞着色浅;

 

染色液覆盖完全:避免涂片边缘未被染色,导致观察时漏检。

 

4、冲洗与干燥技巧

 

水流要缓:蒸馏水冲洗时,水流从涂片上方缓慢流下,避免直接冲击细胞;

 

吸水纸使用:仅按压吸水,不可擦拭,否则会破坏细胞形态。

 

5、镜检操作

 

油镜使用前确保涂片完全干燥:否则香柏油与水分混合,视野模糊;

 

观察后及时清洁油镜:用擦镜纸蘸少量二甲苯擦拭油镜镜头,再用干净擦镜纸擦净。

 

五、常见问题与解决方案

 

问题现象      可能原因         解决方案

 

细胞脱片  涂片过厚、固定不充分、载玻片有油污  涂片薄而均匀;增加火焰固定次数;载玻片用酸液清洗后灭菌

 

细胞着色浅  染色时间不足、染料浓度过低、细胞未固定  延长染色时间;使用新鲜配置的染色液;确保固定充分

 

背景浑浊  冲洗不彻底、染色液过量  延长冲洗时间,直至流出水无色;染色时仅覆盖涂片即可,避免过量

 

细胞形态畸变  高温灼烧、生理盐水浓度不当  固定时避免直接灼烧涂片;使用 0.85% NaCl 维持渗透压

 

六、应用场景

 

快速鉴定微生物基本形态(如区分球菌、杆菌);

 

实验室常规质控(如菌种活化后观察细胞活性);

 

教学实验中基础染色技术训练;

 

工业生产中微生物发酵液的快速镜检(如判断细菌生长状态)。

 

通过以上标准化流程,可确保简单染色的成功率和结果可靠性,为后续革兰氏染色、特殊染色等复杂技术奠定基础。操作时需严格遵循无菌操作规范,避免样品污染,确保实验结果的准确性。

 

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