联科生物推出一波分子新品，电泳是分子最基础的实验，今天小科先和大家聊聊如何得到一张漂亮的电泳图。

一、做一块优质的琼脂糖凝胶

“工欲善其事，必先利其器”，能否做一块好的琼脂糖凝胶，直接影响到后面电泳和结果的分析。制胶前，小科给大家的建议：

1. 在制胶时必须将制胶模具、梳子以及烧杯等物品洗净，以免干胶及其他杂质带入；

2. 在溶胶时应观察溶液中是否有未溶解的琼脂糖颗粒，确保溶胶完全；

3. 在溶液倒入制胶模具前必须充分混匀，以免制出来的胶出现不均匀的现象。

二、选择合适浓度的琼脂糖凝胶

凝胶的浓度是常被忽略问题。小科建议：长片段的DNA选用低浓度的凝胶电泳，短片段的DNA则选用高浓度的凝胶电泳。

表一：分离不同大小的DNA片段所用的最适凝胶浓度

三、选择合适的核酸上样量电泳

要想电泳跑出可见条带的话，至少需要上样50 ng，但是0.5 cm宽的梳子最好不超过0.5μg的DNA量，因为上样量过多会造成加样孔超载，从而导致拖尾或弥散，对于较长的DNA此现象更为明显。另外，加样量的多少还应依据加样孔的大小及DNA片段的长度而定，当加样孔大时，样品上样量应相应加大。

四、选择合适的电压电泳

通常情况下电压越低，走出的电泳条带越平整。低电压电泳时，电泳缓冲液也不容易发烫，也能确保在电泳的过程中凝胶不会变形。当然电压太低，等待电泳结果的时间就会延长，综合考虑，一般控制电泳电压≤5V/cm，即可保证电泳条带的清晰度。
 

五、选择合适的电泳距离（控制电泳时间）

一些片段的DNA，电泳20-30min家常便饭，有的甚至需要更长的时间，如果想稍微快一点，可以选用浓度比较稀的凝胶或稍微调高一点电压进行电泳。

希望以上信息对大家有帮助。以上文章转载于丁香园核酸技术论坛。