传代培养中的细胞传代培养(subculture),当原代培养成功以后,随着培养时间的延长和细胞不断分裂,一则细胞之间相互接触而发生接触性抑制,生长速度减慢甚至停止;另一方面也会因营养物不足和代谢物积累而不利于生长或发生中毒。此时就需要将培养物分割成小的部分,重新接种到另外的培养器皿(瓶)内,再进行培养。这个过程就称为传代(passage)或者再培养(subculture)。对单层培养而言,80%汇合或刚汇合的细胞是较理想的传代阶段。
细胞传代培养方法:贴壁细胞用消化法传代
悬浮生长的细胞采用离心分离后传代
细胞传代步骤
环境准备:相对密封、防尘、防菌的无菌室
操作者准备:双手清洁呈可操作状态
物品准备:超净工作台、CO2培养箱、相差倒置显微镜、离心机、95%酒精灯、PBS、0.25%trypsin(较常用)、10�S(DMEM)(根据需要)、巴氏吸管、25mm培养瓶(根据需要)、75%酒精棉球罐、废液缸
贴壁细胞传代步骤:
①
取适量75%酒精棉球擦拭超净工作台面→各种物品按顺序摆放整齐→点燃酒精灯;
②
培养箱中取出需要传代的细胞→吸管吸除培养瓶内旧培养液弃之;
③ 加入适量PBS清洗细胞两次;
④
加入0.5~1ml胰酶后,置CO2培养箱中或室温25℃消化2~5分钟;
⑤
肉眼见出现针尖样发白间隙;或显微镜下观察,发现胞质回缩、细胞间隙增大;
⑥
直接加少许含血清的培养液,终止消化;
⑦
细胞脱离瓶壁后形成细胞悬液,按要求分别接种在新的培养瓶内;
⑧ 放回CO2培养箱继续培养。
悬浮细胞的传代步骤:
①
直接传代即让悬浮细胞慢慢沉淀在瓶底后,将上清洗掉1/2 ~ 1/3,然后用吸管吹打形成细胞悬液后,再传代.
② 离心法:离心800 ~
1000rpm,5min,弃上清,加新的培养液,然后按一定比例传代接种.
(c)注意事项:1、全程无菌操作观念要强;
2、吸管尽量不要划到细胞贴壁的面;
3、清洗细胞及加胰酶消化时,液体不可直接打到细胞贴壁的面上;尽量轻轻从侧壁加入,液体以能覆盖细胞表面为宜;
4、吹打细胞时动作易轻柔,尽量不要出现大量气泡。
5、细胞未贴壁之前,不要随意移动。
细胞换液步骤:
①
取适量75%酒精棉球擦拭超净工作台面→各种物品按顺序摆放整齐→点燃酒精灯
②
培养箱中取出需要传代的细胞→吸管吸除瓶内旧培养液;
③
取适量PBS清洗细胞(此步骤也可省略)
④
补足新培养液
⑤
放置于CO2培养箱
注意事项:1、全程无菌操作观念要强;
2、加培养液时,不可直接加到细胞贴壁的面上
另本实验室除了提供细胞原代,细胞传代,细胞株等技术服务以外,还提供细胞培养方面的技术培训,主要包括:全套细胞(复苏,冻存,
传代,计数)的规范培训,原代细胞的培养,
肿瘤干细胞的富集培养,肿瘤干细胞的流式分选,基因转染,功能获得与缺失等。以上技术只针对高校本科以上学员及高校技术人员。
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