如果是纯粹的蛋白研究都可以.在-80度保存一两年都没问题，如果要研究蛋白质修饰的话.比如磷酸化蛋白在-80度保存个把月后会有很大一部分的pi丢失.

  在做磷酸化WB时，加药后孵育10min立即用预冷PBS洗去药物，然后冰上操作裂解细胞，裂解液也是预冷的，整个过程速度要快。加了裂解液冰上吹打30min，然后4度14000转离心30min，取上清，加sample buffer煮沸10min，-70保存长时间保存，如果短期内做可以-20保存。这就是磷酸化蛋白处理过程。

  以下是来自网络的各个样本的保存方法：

1、悬浮细胞样品：把细胞及培养液一起收集到15ml或者50ml离心管中，1500rpm离心3min，弃去上清；加入PBS轻轻吹打，1500rpm离心3min，弃去上清；反复3次，弃去上清后于-80度或者液氮冻存待用。在避免冻融的情况一般保存1年，建议尽快检测。
2、贴壁细胞样品：
2.1 胰酶消化：用胰酶将细胞消化后，收集到15ml或者50ml离心管中，1500rpm离心3min，弃去上清；加入PBS轻轻吹打，1500rpm离心3min，弃去上清；反复3次，弃去上清后于-80度或者液氮冻存待用。在避免冻融的情况一般保存1年，建议尽快检测。
2.2 细胞刮子收集细胞：对于某些蛋白（即对胰酶比较敏感或者实验特殊要求，如E-Cadherin不易用胰酶消化后进行WB检测），直接用细胞刮子刮下细胞，收集到EP、15ml或者50ml离心管中，1500rpm离心3min，弃去上清；加入PBS轻轻吹打，1500rpm离心3min，弃去上清；反复3次，弃去上清后于-80度或者液氮冻存待用。在避免冻融的情况一般保存1年，建议尽快检测。
3、动物组织样品：取下合适的动物或者人的组织样品后用预冷的PBS或者生理盐水漂洗，尽量除尽残留血液，用滤纸把多余PBS吸取干净。把组织分成约50mg大小（依据实验目的需要进行调整），用锡纸分别包装好或者用冻存管装好，于-80度或者液氮中保存。在避免冻融的情况一般保存1年，建议尽快检测。
4、植物样品：取得待测植物样品后，用蒸馏水把泥土漂洗干净，用滤纸把多余水分吸取干净，分装成合适大小于-80度或者液氮中保存。在避免冻融的情况一般保存1年，建议尽快检测。
5、细菌样品：细菌培养完成后，10000rpm离心5min收集细菌，加入PBS吹打，10000rpm离心5min，弃去上清；反复3次，弃去上清后于-80度或者液氮冻存待用。
6、若要检测磷酸化蛋白，请在3个月内进行。长时间保存样品容易使磷酸化蛋白去磷酸化而检测不到磷酸化条带。
7、提取胞浆、胞核蛋白的样品应尽量采用新鲜样品，冻存样品提取的胞核蛋白可能会减少。
8、血液样品（血浆中蛋白）：3000rpm离心20min后收集上清，分装后于-80度或者液氮冻存待用。3个月以内检测。
9、长距离运送样品时采用干冰或者液氮。
样品的实际需要量及WB技术服务请打电话咨询。