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枯草芽孢杆菌的转化方法-总结

(2011-03-22 14:54:01)
标签:

转化

电转

质粒

枯草芽孢杆菌

感受态细胞

  尝试过很多方法转化枯草芽孢杆菌,有成功有失败,好多人问过我如何转化,我先介绍一下经典的电转化方法,这种方法在网上能够搜索到,本方法在本实验能够很好的重复,故公布。

宿主菌:bacillus subtilis WB600 质粒:PWB980,PBE2,PDG148等。

 

实验试剂:

GM:LB+0.5M 山梨醇

ETM:0.5M山梨醇,0.5M甘露醇,10%甘油

RMLB+0.5M山梨醇+0.38甘露醇

 

电转仪:Bio-Radgene-pulser

 

方法:

1)新鲜平板挑单菌落(小一点为好)接种于5mlLB培养基中,过夜培养. 
2
)测量摇管内OD,控制好接种量,使接种完毕后培养基的OD0.19-0.2之间。培养基为50mlGM37200rpm培养至OD600=1.0(大约3-4小时)左右。
3
)取全部菌液冰水浴10 min,然后5000rpm8min4离心收集菌体。 
4
)用40ml预冷的电转缓冲液ETM洗涤菌体,5000rpm8min4离心去上清,如此漂洗3次。 
5
)将洗涤后的菌体重悬于500μlETM中,每管分装60μl.

6)将60μl感受态细胞中加入1-6 μl质粒,冰浴孵育5min,加入预冷的电转杯(1mm)中,电击一次。电转仪设置:2.0kv(另外我还尝试过0.8kv1.2kv,25μF200Ω1mm,电击1(持续时间4.5ms-5ms之间)

7)电击完毕立即加入1ml 复苏培养基RM37200rpm,复苏3h后,涂板。37,过夜培养

 

枯草芽孢杆菌电转化注意事项:

1. 电转持续时间的把握:最好能控制在4.2ms以上,若出现击穿现象,可将感受态细胞以100μl每管分装,采用2mm电转杯,2500v脉冲。

 2. 感受态可以适当的冻存,我试过一个月后再使用感受态,效果比刚感受态制出来时要好,可能冻融对细胞壁的破坏大。

 3. 平板的抗性可适当降低。

 4. 复苏时可以在大试管内复苏,提高溶氧。复苏时可降低转速。

5. 一定要注意原料的纯度,尤其是甘露醇与山梨醇。不知道大家配出来的RM培养基是什么颜色,我的是暗红色。有一次使用了纯度为99.5%的甘露醇而不是以前使用的纯甘露醇,就是不能成功转化。

6.如果需要提高转化率,可是试试在ETM内加入0.5M的海藻糖,还是挺管用的,


常见问题及分析

1.电转时间不够,小于4ms,甚至直接击穿。

 

可能原因:电转杯没洗干净;感受态制备不好,洗涤次数不够或者操作不严谨;质粒没有用去离子水洗脱,质粒溶液内含盐 。

 


                                                                     2011年3月26日

                                                                      ——河岸整理

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