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The rational for RNA interfering technology

(2008-02-29 10:09:48)
标签:

rna干扰

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帕金森病

自噬

 

The rational for RNA interfering technology

 

    目前,RNAi技术已经成为研究热点,该方法主要采用向生物体内导入dsRNA(double chain small RNA, dsRNA),从而关闭特殊基因的表达。该方法可以用于基因功能的研究、快速地建立动物模型、药物筛选等很多方面。

        2006年诺贝尔生理学或医学奖授予美国科学家安德鲁·法尔和克雷格·梅洛,以表彰他们发现了RNA干扰机制。

    1990年,曾有科学家给矮牵牛花插入一种催生红色素的基因,希望能够让花朵更鲜艳。但意想不到的事发生了:矮牵牛花完全褪色,花瓣变成了白色!科学界对此感到极度困惑。类似的谜团直到1998年美国科学家安德鲁·法尔和克雷格·梅洛发现了RNA干扰机制才得到科学地解释。根据法尔和梅洛的发现,科学家在矮牵牛花实验中观察到的奇怪现象,其实是生物体内某种特定基因“沉默”了。导致基因“沉默”的机制就是RNA干扰机制。

    此前,RNA分子只是被当作从DNA到蛋白质的“中间人”、将遗传信息从“蓝图”传到“工人”手中的“信使”。但法尔和梅洛的研究让人们认识到,RNA的作用不可小视,它可以使特定基因开启、关闭、更活跃或更不积极,从而影响生物的生长和发育等。“他们的发现揭示了控制遗传信息流动的自然机制。这开启了一个新的研究领域” 。

    RNAi的初始阶段,dsRNA(一般大于30bp) 通过转染等方式进入细胞后,在Dicer酶的作用下被酶解成小RNA(small interfering RNAs, siRNA), siRNA的长度一般在21~25nt, 并且在3’ 端有2个突出的不配对碱基。该剪切过程是依赖ATP的,并且Dicer酶属于RNaseⅢ家族中一种对dsRNA具有特异性的一种核苷酸。siRNA是一种短片断双链RNA分子,能够以同源互补序列的mRNA为靶目标降解特定的mRNA, 这个过程就是RNA干扰途径(RNA interference pathway)。

   RNAi的活化阶段,上述剪切产生的siRNA 与核酸酶复合物组成RNA诱导复合物(RNA-induced silencing complexes, RISC), RISC的活化需要ATPsiRNA的共同作用。活化后的RISC复合物中的反义链与目的基因转录出的mRNA 结合后,激活RNA诱导复合物中的核酸酶,降解目的mRNA。在降解的过程中,对mRNA进行酶解的RNaseDicer是不同的,而且降解的位置大致位于离mRNA 3’12 个碱基附近。

在最后的酶解mRNA过程中,反义链siRNAmRNA之间的配对起了重要的引导作用,最终引导核酸酶降解mRNA,完成对特定基因的干扰。一般而言,反义链siRNAmRNA 之间一个碱基的错配就可以使干扰效率大大降低。可见在进行RNAi 的研究中获得高效率的siRNA是很重要的,一般针对一个特定基因,需要设计、合成3~4siRNA序列。

  目前合成特定siRNA有两种方法。化学合成法和体外酶学合成法。目前为止较为常用的4种制备siRNA的方法包括:化学合成;体外转录;siRNA表达载体或者病毒载体在细胞中表达siRNA; PCR制备的siRNA表达框在细胞中表达。

体外制备

1.化学合成

  尽管化学合成是最贵的方法,但却是最方便的。很多公司可以根据用户要求提供高质量的化学合成siRNA。主要缺点是价格高,定制周期长,特别是有特殊需求的。由于价格比其他方法高,比较常见的做法是用其他方法筛选出最有效的序列在进行化学合成。

  最适应于:已经找到最有效的siRNA的情况下,需要大量siRNA进行研究。

  不适用于:筛选siRNA等长时间的研究。主要是价格问题。

体外转录

  通过体外转录的方法可以合成siRNAs, 这样的成本相对化学合成法而言相对较低,是一种性价比高的筛选siRNA的好方法。更重要的是采用这种方法能够比化学合成法更快地得到siRNAs。这个方法的不足之处是试验的规模受到限制,虽然一次体外转录能够提供足够做上百次转染的siRNA,但是反应规模和量始终有一定的限制。值得一提的是体外转录得到的siRNA只要较低的浓度就可以达到化学合成siRNAs较高浓度得到的效果。

  最适用于:筛选siRNAs, 特别是需要制备多种siRNAs,化学合成的价格成为障碍时。

  不适用于:试验需要大量的,一个特定的siRNA。长期研究。

体内表达

3. siRNA表达载体

  多数的siRNA表达载体依赖3种RNA聚合酶Ⅲ启动子(pol Ⅲ)中的一种,操纵一段小的发夹siRNA在哺乳动物细胞中的表达。要使用这类载体,需要订购2段编码短发夹RNA序列的DNA单链,退火,克隆到相应载体的pol Ⅲ 启动子下游。由于涉及到克隆,这个过程需要几天的时间,同时也需要通过测序以保证克隆的序列是正确的。

  毫无疑问,siRNA表达载体的优点在于这是众多方法中唯一可以进行长期研究的方法。带有抗生素标记的载体可以在细胞中持续抑制靶基因的表达,持续数星期甚至更久。

  最适用于:已知一个有效的siRNA序列,需要较长时间的基因沉默,或者需要用抗生素筛选能表达siRNA的细胞。长期研究。

4siRNA表达框架

  siRNA表达框架(siRNA expression cassettes, SECs)是一种由PCR得到的siRNA表达模版,能够直接导入细胞进行表达而无需事前克隆到载体中。该模版包括一个RNA pol Ⅲ 启动子,一段发夹结构siRNA,一个RNA pol Ⅲ终止位点。和siRNA表达载体不同的是,SECs不需要载体克隆、测序等颇为费时的步骤,可以直接由PCR得到,不用一天的时间。因此,SECs成为筛选siRNA的最有效工具,甚至可以用来筛选在特定的研究体系中启动子和siRNA的最佳搭配!如果在PCR两端添加梅切位点,那末通过SECs筛选出的最有效的siRNA后,可以直接克隆到载体中构建siRNA表达载体。构建好的载体可以用于稳定表达siRNA和长效抑制的研究。

  这个方法的缺点是PCR产物很难转染到细胞中。另外,没有克隆到载体中的PCR片断并不适用于大规模植被。

  最适用于:筛选PCR序列,在克隆到在提前筛选最佳启动因子

  不适用于:长期抑制研究。   

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