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蛋白质测序样品要求

(2007-05-21 16:15:41)
分类: 实验文章
 

样品要求

一、 一般通则

1、确定样品N端未被封闭, 否则只要测定后需收开机费.

2、样品如被修饰,请详细告知修饰方式(如CYS的PE修饰,或者CM的修饰)

3、若为已知序列样品,请告知预期序列信息

4、如果样品有特殊理化性质(如特殊酶活性,特殊结构:如含糖单元结构等),请详细说明。

5、请务必告知样品分子量大致范围,如果不能准确确定其分子量,本公司可以帮助测定.

6、建议客户提供溶液样品或含样品的PVDF膜,微量样品尽量不要以冻干粉形式提供,以避免样品损失,特殊情况请致电深圳市翰宇生物工程有限公司咨询。

二、  溶液样品

1、 样品纯度应达到95%以上(HPLC), 标明准确纯度, N-端必须是均一的高纯样品,并纯度越高,实验结果越理想.纯度可以用采用HPLC,SDS-PAGE或质谱或CE鉴定,建议用2种方法鉴定。

2、 样品量不低于50Pmol ,若浓度为5pmol/μl, 体积不少于10μl, 大于10pmol/μl 越好,并标明准确浓度例如:分子量20000的蛋白,50Pmol约为1微克.

3、 标明样品缓冲液的成份,保证其样品缓冲液中不含蛋白酶,样品中尽量不含不挥发性的无机盐,浓度在50Mmol/L内,不含变性剂(SDS)等杂质。

4. 样品测试前不能放置太久,在-20℃以下冷冻保存

三、  PVDF膜样品

1、为防止部分蛋白质可能发生的在电泳过程中被胶内杂质封闭N末端。请考虑做预电泳。即用低电流跑空胶2~2.5小时后再上样进行电泳分离。

2、 电转移缓冲液建议使用CAPS缓冲液,尽量不要使用Tris—甘氨酸缓冲液

3、电泳过程中,应尽量避免条带拖尾现象。用于测序的PVDF膜上条带应狭窄清晰。

4、尽量使用厚胶转膜,保证转膜后单位面积上样品量相对多些。若转膜后目的条带不够清晰,请累积三条以上的目的条带用于测序。

5、样品转膜后,请使用Coomassie R-250染色,避免使用Coomassie G-250。

6、含样品的PVDF膜带用滤纸吸干或者自然凉干后请保存在密闭塑料袋中,冰箱内可以放置3个月左右。

 

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