银染是和考马斯亮蓝染色相比，在分辨率上要强很多，在分析细胞组织蛋白组分差异性的时候经常会用的。关于银染有很多不同的方法，这里就比较严谨和繁琐的一种方法介绍一下：实验步骤如下：

1、固定  室温10min，200ml（以充分浸透为准）；

配方：乙醇：冰乙酸：水=4：1:5;

2、dH₂O漂洗充分，200ml，10min；

3、加敏化剂，室温5min，200ml（以充分浸透为准）

配方：戊二醛（成品：25%水溶液） 200ul，

      甲醛：（成品：37%）10ul。

乙醇： 40ml，稀释成100ml

4、40%乙醇（V/V）充分漂洗，200ml，20min，

5、dH₂O充分漂洗200ml，20min，

6、加敏化剂，100ml，1min；

配方：0.02%硫代硫酸钠（w/v）即0.2g/L；

7、dH₂O充分漂洗，200ml，2次，1-2min/次；

8、加0.5%硝酸银（w/v） ，200ml室温20min；

以先配成20%母液（2g/10ml）新鲜配制使用；

9、dH₂O充分漂洗，200ml，2次，1-2min/次；

10、加显色剂100ml至胶转黄（约1min）；

重新换新的显色即直到所需显色情况（约15min）

配方：碳酸钠 5g，甲醛（37%） 0.02%（v/v）加水200ml即成。

11、终止：5%冰乙酸，5min；

12、保存，于0.03%碳酸钠中

     需要说明的是，显色剂中的0.02%（v/v）是成品甲醛的浓度，而不是甲醛的真实浓度，也就是在200ml中加入0.04ml，我在做的时候以为0.02%（v/v）是甲醛的终浓度，导致我加入甲醛是0.108ml。

    另外我做了几次，第二次我做失败过，在显色的时候胶带什么都没有，一块白，仔细回忆，我想可能在硝酸银染色后用水洗的时间太长，把硝酸银都冲洗掉了，导致最后无法显色，在baidu和丁香园的搜索后我更加坚定了这个想法。由于蛋白样品比较珍贵，因此面对这样一块白色的胶带我郁闷了很久，最后我仔细看了一下步骤，觉得重新染色的可能性很大。于是我用水反复冲洗，把显色液冲掉，然后再用硝酸银染色，最后重复了一下，这次我很注意用水洗得时间。最后结果显示我的想法是对的，如果没有染色上可以重新染的。而且奇怪的是这次操作的染色比之前做过的还要好，条带很清晰，尤其是那些微量蛋白带都很明显。