细胞株构建的核心流程与注意事项及常见问题与解决方案!
(2025-07-08 16:03:59)
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分类: 细胞 |
细胞株构建的核心流程与注意事项及常见问题与解决方案!
百欧博伟生物:细胞株构建是分子生物学和细胞生物学研究中常用的技术手段,主要用于稳定表达特定基因(如荧光蛋白、功能蛋白或shRNA等)的细胞系。以下是其核心流程及注意事项:
一、细胞株构建核心流程
1、实验设计
选择宿主细胞:根据实验目的选择适合的细胞系(如HEK293、CHO、HeLa等),需考虑细胞的转染效率、增殖速度和代谢特性。
目的基因设计:构建目标基因(如过表达、敲除或突变体),需包含启动子(如CMV强启动子)、筛选标记(如Puromycin抗性基因、Neomycin抗性基因)及报告基因(如GFP)。
转染方法选择:根据细胞类型选择脂质体转染、电穿孔、病毒载体(慢病毒/逆转录病毒)或CRISPR-Cas9系统。
2、载体构建
克隆目的基因:将目标基因插入表达载体,通过酶切连接、Gibson组装或CRISPR定向整合。
验证载体正确性:通过测序、限制性酶切或PCR确认载体结构。
3、转染
瞬时转染:快速验证基因表达(24-72小时),但无法获得稳定细胞株。
稳定转染:
将载体导入宿主细胞,随后通过抗生素筛选富集成功整合外源基因的细胞。
病毒转染需先包装病毒颗粒,再感染靶细胞。
4、筛选与单克隆化
抗生素筛选:持续施加选择性压力(通常7-14天),淘汰未转染的细胞。
单克隆分离:
有限稀释法:将细胞稀释至0.5-1个/孔接种于96孔板,确保单克隆来源。
流式分选:利用荧光报告基因(如GFP)分选单细胞。
扩大培养:挑选高表达单克隆扩增至6孔板、培养瓶。
5、验证
基因组水平:PCR或qPCR检测外源基因整合。
转录水平:RT-qPCR验证mRNA表达。
蛋白水平:Western blot、免疫荧光或流式细胞术检测目标蛋白表达。
功能验证:根据基因功能设计实验(如酶活性检测、细胞表型分析)。
6、扩增与保藏
冻存:将验证后的细胞株分装冻存于液氮(含10% DMSO的冻存液)。
稳定性检测:连续传代(如10代以上)后检测基因表达是否稳定。
7、表型鉴定(可选)
根据研究目的进行功能分析(如增殖、迁移、凋亡、代谢通路变化等)。
二、常见问题与解决方案
三、注意事项
严格无菌操作:避免支原体污染(定期检测)。
单克隆验证:务必确保单克隆来源,避免混合细胞干扰结果。
对照设置:包括空载体对照、未转染细胞对照及抗生素杀伤曲线实验。
长期稳定性:定期复苏冻存细胞验证表达一致性。
四、应用场景
基因功能研究(过表达/敲除)
药物靶点筛选
蛋白生产(如CHO细胞生产抗体)
疾病模型构建(如肿瘤耐药株)
通过上述流程,可获得稳定、均一的目标细胞株,为后续研究提供可靠工具。
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