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LDH法测定NK细胞活性实验步骤

(2023-04-20 10:42:09)
标签:

ldh

氧化型辅酶

细胞

培养液

LDH基质液的配制:
乳酸锂5×10-2mol/L、硝基氯化四氮唑(INT) 6.6×10-4mol/L、吩嗪二甲酯硫酸盐(PMS) 2.8×10-4mol/L、氧化型辅酶(NAD) 1.3×10-3mol/L将上述试剂溶于0.2mol/L的Tris-HCl缓冲液中(pH8.2)
靶细胞的传代(YAC-1细胞):
实验前24h将靶细胞进行传代培养。应用前以Hank's液洗3次,用RPMI1640完全培养液调整细胞浓度为4×105个/mL。
脾细胞悬液的制备(效应细胞):
无菌取脾,置于盛有适量无菌Hank's液的小平皿中,用镊子轻轻将脾磨碎,制成单细胞悬液。经200目筛网过滤,或用4层纱布将脾磨碎,或用Hank's液洗2次,每次离心10min(1000r/min)。弃上清将细胞浆弹起,加入0.5mL灭菌水20秒,裂解红细胞后再加入0.5mL2倍Hank’s液及8mLHank’s液,1000rpm,10min离心,用1mL含10%小牛血清的RPMI1640完全培养液重悬,用1%冰醋酸稀释后计数(活细胞数应在95%以上),用台酚兰染色计数活细胞数(应在95%以上),最后用RPMI1640完全培养液调整细胞浓度为2×107个/mL。
NK细胞活性检测:
取靶细胞和效应细胞各100μL(效靶比50:1),加入U型96孔培养板中;靶细胞自然释放孔加靶细胞和培养液各100μL,靶细胞最大释放孔加靶细胞和1%NP40或2.5%Triton各100μL;上述各项均设三个复孔,于37、5%CO2培养箱中培养4h,然后将96孔培养板以1500r/min离心5min,每孔吸取上清100μL置平底96孔培养板中,同时加入LDH基质液100μL,反应3min,每孔加入1mol/L的HCl30μL,在酶标仪490nm处测定光密度值(OD)。

LDH法测定NK细胞活性实验步骤

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